1. Indicaciones

• Evaluar acumulación anómala de líquido en cavidad peritoneal (ascitis) o torácica (derrame pleural).
• Signos clínicos: distensión abdominal, disnea, ruidos cardio-pulmonares disminuidos, estertores, esfuerzo respiratorio o malestar abdominal.
• Sospecha de procesos inflamatorios, neoplásicos, cardiopatías o alteraciones sistémicas que generen efusión.

2. Obtención de la Muestra

• Recoger líquido en tubo con EDTA para preservar morfología celular y evitar coágulos; mantener un segundo tubo sin anticoagulante para análisis bioquímico y cultivo microbiológico.
• Ascitis: realizar abdominocentesis con aguja 20–22 G y jeringa de 5–20 mL, posición esternal o lateral, tras asepsia y anestesia local; colocar llave de tres vías para evitar reingreso de aire o sangre periférica.
• Derrame pleural: ejecutar toracocentesis entre 7.ª–9.ª costilla, zona costo-condral, con aguja mariposa o catéter 18–20 G y jeringa de 10–20 mL; posición esternal o de pie según tolerancia del paciente.

3. Preparación de Extendido y Fijación

• Inmediatamente extender una gota fina en porta limpio y dejar secar al aire 1–2 min.
• Fijar con metanol puro 3–5 min en el mismo consultorio; no exponer a vapores de formol que generen artefactos celulares.
• Etiquetar adecuadamente con datos de paciente, especie y localización de la muestra.

4. Tinción

• Técnicas Romanowsky rápidas en clínica: Diff-Quik o Wright–Giemsa para contraste rápido de núcleos y citoplasma celular.
• Para evaluación detallada: May–Grünwald–Giemsa o Hemacolor, que realzan morfología nuclear y patrones de inclusiones.

5. Parámetros Citológicos y Hallazgos

• Carácter físico: color (seroso, hemorrágico, turbio), viscosidad y presencia de grumos o fibrina.
• Conteo celular: estimado en frotis o cámara de Neubauer; valorar celularidad baja (<1 000 células/µL), intermedia o alta (>5 000 células/µL) según criterios generales de transudado, modificado y exudado.
• Proteínas totales: medir con refractómetro o analizador; transudados (<2,5 g/dL), exudados (>3 g/dL) y modificados intermedios según manual veterinario.
• Tipo celular:

• Mesoteliales y linfocitos en transudados puros.
• Neutrófilos degenerados y macrofagos en exudados sépticos.
• Células mesoteliales reactivas o neoplásicas con atipias nucleares en efusiones neoplásicas.
• Células redondas o linfoplásicas en linfoma, células adenocarcinomatosas en carcinomatosis.

6. Interpretación y Limitaciones

• La combinación citológico–bioquímico permite clasificar tipo de efusión y orientar etiología (inflamatoria, neoplásica, cardiogénica).
• Muestras tardías sufren autolisis y pérdida de núcleos; ideal procesar en ≤1 hora tras extracción o conservar a 4 °C hasta 24 h.
• EDTA puede alterar ligeramente la morfología de leucocitos si se prolonga almacenamiento>24 h.
• Citología de efusión tiene sensibilidad moderada; confirmar sospechas de neoplasia con inmunocitoquímica o biopsia y de infección con cultivo o PCR.